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柱式血液RNA-DNAout

更新時間:2013-06-25 點擊量:1239

柱式血液RNA-DNAout
產品及特點 本產品是北京天恩澤在柱式血液RNAOUT(CAT#:7202)基礎上開發的升級產品,采用先裂解紅細胞后純化白細胞,再從中分別提取總RNA和DNA的策略。本產品具有下列特點:
. 本產品可用于血液RNA提取、血液DNA提取以及DNA和RNA雙提,充分利用寶貴的血液樣品。
2. 無需使用有毒的酚和氯仿,綠色環保。
3. 采取先裂解紅細胞的兩步法,避免了血紅素等對RNA和DNA的污染。
4. RNA直接從白細胞胞漿中提取,*避免了細胞核基因組DNA的污染。
5. 純度高,RNA的OD260/280均在2.0左右,DNA的OD260/280均在.8-.9左右
6. 產率高,對新鮮血液樣品RNA產率一般為5-50 ug/mL,DNA的產率一般在5-8 ug/mL。對凍存血,RNA和DNA產率跟凍存時間密切相關,波動。
7. 與常用的抗凝劑(包括肝素,EDTA,檸檬酸鈉,草酸鈉)兼容。
8. 得到的RNA可以直接用于RT-PCR和Northern雜交等研究。所得的DNA可直接用于PCR、酶切等實驗。
9. 如果需要提取細胞核中的RNA前提,或者提取胞漿中線粒體DNA,則不能使用本方法。
規格及成分 成 份 A型
RNA提取 B型
DNA提取 C型
RNA-DNA雙提
C型紅細胞裂解液 75 mL 75 mL 75 mL
白細胞裂解液 5 mL 5 mL 5 mL
核酸上柱液 50 mL 50 mL 00 mL
離心吸附柱 50套 50套 00套
通用洗柱液 50 mL 50 mL 00 mL
RNA洗脫液 0 mL 無 0 mL
DNA洗脫液2.0 無 0 mL 0 mL
使用手冊 份 份 份

運輸及保存 常溫運輸,4℃保存,有效期一年。
自備試劑 RNase-free離心管。
使用方法 一:紅細胞裂解(請提前將白細胞裂解液放置在冰上預冷)
. 在.5 mL塑料離心管中,加入0.75 mL新鮮或解凍后的抗凝全血,再加入等體積(0.75 mL)的C型紅細胞裂解液,輕柔顛倒混勻。
2. 4000-5000 g 4℃離心0分鐘,棄上清(紅色)。
3. 在細胞沉淀中再加入0.75 mL的C型紅細胞裂解液,重懸沉淀細胞(由白細胞和殘留的紅細胞組成)。
4. 4000-5000 g 4℃離心0分鐘,棄上清。
5. 在細胞沉淀中再加入0.3 mL冰上預冷的的白細胞裂解液,重懸沉淀細胞(主要由白細胞組成)。
6. 冰上放置5分鐘后以裂解白細胞,8000-0000 g 4℃離心8分鐘,將上清(含RNA的胞漿)轉移到RNase-free的塑料管中,立即進行RNA提取。沉淀(細胞核)可暫時存放在-20℃冰箱,用于后續基因組DNA提取。

二:RNA提取
. 在約0.3 mL含RNA的胞漿液中加入 mL溶液C,充分震蕩混勻。
2. 室溫放置0分鐘。
3. 將混合液分2次轉移到離心吸附柱中。每次轉移約0.7 mL,然后室溫2000-5000 g離心半分鐘,棄穿透液,再轉移剩下的混合液,再室溫2000-5000 g離心半分鐘,棄穿透液。
4. 加0.7 mL通用洗柱液到離心吸附柱中,2000-5000 g室溫離心半分鐘,棄穿透液。
5. 如果有必要,可以再加0.3 mL通用洗柱液,室溫離心半分鐘,棄穿透液。注意:增加此步可以進一步提高RNA的純度。
6. 室溫2000-5000 g離心半分鐘。此步十分重要,否則殘留的通用洗柱液會影響RNA的后續反應。
7. 將離心吸附柱轉移到一個RNase-free的收集管(可用.5 mL的RNase-free塑料離心管替代)中,加入50-00 uL RNA洗脫液,室溫放置-2分鐘。
8. 2000-5000 g室溫離心半分鐘,離心管中溶液即為RNA樣品,可以立即用于后續實驗或存放于-80℃待用。
9. RNA完整性的電泳檢測:如果需要做Northern雜交,強烈建議用戶使用甲醛變性膠進行RNA電泳,因為非變性膠不能分離所有的RNA分子(BioTechniques,28:44,2000)。
0. RNA產量產率測定:將5-0 μL RNA溶于TE緩沖液中(pH7.5-8.2之間)檢測其在OD260的光吸收。通過光吸收可以得出RNA濃度( OD260的RNA=40 μg/mL),進而計算出RNA的產量(濃度X體積)和產率(RNA產量/組織用量)。人血RNA產率一般為5-20 ug/mL。
. RNA純度測定:無污染的總RNA的OD260/OD280一般在2.0左右(具體數值與其堿基組成和溶液成分等多種因素有關),高于此范圍則分別表示樣品可能有蛋白質污染,但一般不影響RT-PCR等反應。

三:基因組DNA提取
2. 在白細胞細胞核沉淀中加入 mL溶液C,用移液槍充分吹打使溶液不粘稠,否則很難穿過吸附柱。
3. 室溫放置0分鐘。
4. 將混合液分2次轉移到離心吸附柱中。每次轉移約0.7 mL,然后室溫2000-5000 g離心半分鐘,棄穿透液,再轉移剩下的混合液,再室溫2000-5000 g離心半分鐘,棄穿透液。
5. 加0.7 mL通用洗柱液到離心吸附柱中,2000-5000 g室溫離心半分鐘,棄穿透液。
6. 如果有必要,可以再加0.3 mL通用洗柱液,室溫離心半分鐘,棄穿透液。注意:增加此步可以進一步提高DNA的純度。
7. 室溫2000-5000 g離心半分鐘。此步十分重要,否則殘留的通用洗柱液會影響DNA的后續反應。
8. 將離心吸附柱轉移到一個收集管中(可用.5 mL的塑料離心管替代),加入50-00 uL DNA洗脫液2.0,室溫放置-2分鐘。
9. 2000-5000 g室溫離心半分鐘,離心管中溶液即為基因組DNA。
20. 可以在離心吸附柱中再加入30-50 uL DNA洗脫液2.0洗脫基因組DNA。
2. 匯集2次洗脫的基因組DNA,可以立即用于后續實驗或存放于-80℃待用。
 

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